Aleurode du tabac

Classification
Règne	Animalia
Embranchement	Arthropoda
Sous-embr.	Hexapoda
Classe	Insecta
Sous-classe	Pterygota
Infra-classe	Neoptera
Ordre	Hemiptera
Sous-ordre	Sternorrhyncha
Super-famille	Aleyrodoidea
Famille	Aleyrodidae
Sous-famille	Aleyrodinae
Genre	Bemisia

Aleurode du tabac, Mouche blanche

Bemisia tabaci, l'aleurode du tabac, appelé aussi aleurode du cotonnier^[1] ou aleurode de la patate douce^[2], est une espèce d'insectes hémiptères de la famille des Aleyrodidae, à répartition cosmopolite.

C'est l’un des principaux ravageurs des cultures, composé de nombreuses sous-espèces. Décrit pour la première fois en Grèce sur le tabac (1889), B. tabaci est mondialement distribué dans les régions tropicales et subtropicales à l’état naturel, et en serre dans les régions plus tempérées.

Anatomie et cycle de vie

Les imagos jaune soufre sont fréquemment en nombre sous les feuilles d’où ils s’envolent au moindre dérangement. Les œufs sont pondus en cercle^[3].

Conséquences sur les cultures

L'aleurode du tabac est un insecte polyphage (décrit sur plus de 900 espèces de plantes potagères et ornementales) occasionnant des dégâts directement par succion de la sève phloémienne et excrétion de miellat (qui a pour conséquence une baisse de la valeur marchande des produits et facilite l’implantation de saprophytes sur la plante), et indirectement par transmission de nombreux virus phytopathogènes : Crinivirus, Ipomovirus, Begomovirus, comme le virus des feuilles jaunes en cuillère de la tomate (TYLCV, Tomato Yellow Leaf Curl Virus) responsable de pertes chiffrables en millions de dollars, dont il est le vecteur exclusif^[4].

Les dégâts sont tels que jusqu’à la totalité d’une récolte peut être perdue. C’est pourquoi en France cet insecte est soumis par l’arrêté du 31 juillet 2000 à des mesures de lutte obligatoire et à des mesures de quarantaine dans l’importation de végétaux. Par directive européenne, la détection du TYLCV entraîne la destruction systématique des plants concernés.

Gestion et lutte

Dans le cadre du contrôle cultural, la légumineuse Crotalaria juncea est utilisée pour constituer une barrière physique qui limite les déplacements de l'aleurode au sein de la parcelle^[5].

Taxonomie

En réalité B. tabaci est un complexe d’espèces cryptiques morphologiquement identiques. Historiquement, la forte variabilité observé au sein de l'espèce (spectre de plantes hôtes, transmission de virus, localisation géographique, provocation de l'argenture, résistance aux insecticides, bactéries symbiotiques...) a amené les auteurs à décrire différents "biotypes" (plus d'une trentaine) sur la base des caractères précédents. Ces biotypes pouvaient être différenciés sur la base de marqueurs moléculaire tels que les allozymes, puis le gène mitochondrial de la cytochrome oxidase I (COI) ainsi que les microsatellites. Certaines barrières reproductives avaient été mise en évidence entre ces biotypes^[3].

En 2010, des travaux ont essayé d'éclaircir la situation et ont proposé une phylogénie de Bemisia tabaci composée de 24 espèces, reposant sur les distances observées sur le gène COI. En 2013, les derniers travaux faisaient état de 34 espèces mais les choses évoluent très vite puisque seulement deux mois après, une nouvelle espèce était découverte en Tanzanie. Néanmoins, ces résultats restent discutés car ceci repose sur la seule description d'un gène mitochondrial et non sur des données biologiques telles que l'isolement reproducteur (pour la majorité des espèces en tout cas).

Synonymes

Source = Delivering alien invasive species inventories for Europe (DAISIE)^[6]

Aleyrodes inconspicua Quaintance
Aleyrodes tabaci Gennadius
Bemisia (Neobemisia) hibisci Visnya
Bemisia (Neobemisia) rhodesiaensis Visnya
Bemisia achyranthes Singh
Bemisia bahiana Bondar
Bemisia costa-limai Bondar
Bemisia emiliae Corbett
Bemisia goldingi Corbett
Bemisia gossypiperda Misra et Lamba
Bemisia gossypiperda var. mosaicivectura Ghesquiere
Bemisia hibisci Takahashi
Bemisia inconspicua Quaintance
Bemisia longispina Priesner et Hosny
Bemisia lonicerae Takahashi
Bemisia manihotis Frappa
Bemisia minima Danzig
Bemisia miniscula Danzig
Bemisia nigeriensis Corbett
Bemisia rhodesiaensis Corbett
Bemisia signata Bodnar
Bemisia tabaci (Gennadius) Takahashi
Bemisia vayssierei Frappa

Endosymbiotes

Les aleurodes qui se nourrissent exclusivement sur de la sève phloémienne ont des bactéries endosymbiotiques contenues dans des cellules spécialisées, les bactériocytes, agrégés en organes appelés bactériomes. Ces bactéries sont divisés en deux types : les symbiotes primaires ou obligatoires et les symbiotes secondaires ou facultatifs. Chez Bemisia tabaci, le symbiotes obligatoire est Portiera aleyrodidarum, il apporte des nutriments essentiels. B. tabaci est aussi infecté par sept autres symbiotes secondaires facultatifs se transmettant verticalement et appartenant aux genres Arsenophonus, Cardinium, Hamiltonella, Rickettsia, Fritschea, Wolbachia et Hemipteriphilus. Les infections multiples (par plusieurs symbiotes secondaires différents) sont courantes. Les phénotypes associés à ces symbiotes secondaires sont encore peu connus chez B. tabaci, ils seraient impliqués dans des résistances aux insecticides, au stress thermique ainsi que dans l'amélioration de la fitness (fécondité et survie).

Un OGM naturel

Une étude de 2021 révèle que Bemisia tabaci est la première espèce d'insecte connue à avoir emprunté directement un gêne à une plante et à l'avoir intégré dans son génome, ce qui en fait un « OGM naturel ». Ce gêne leur permet de neutraliser des glucosides phénoliques produits par de nombreuses plantes pour se protéger des ravageurs. Ainsi le gène acquis par la mouche blanche leur permet de rendre inoffensives ces toxines produites par des plantes dont il se nourrit. La production de tomates modifiées pour produire un ARN capable de neutraliser l'expression du gène de l'aleurode a provoqué la mort de tous les individus, ce qui laisse présager des méthodes sélectives pour s'en débarrasser sans tuer d'autres insectes^[7]^,^[8].

Miellat

50 % des glucides du miellat de l'aleurode du tabac est constitué de tréhalulose^[9], un diholoside isomère du saccharose.

Philatélie

Cet insecte figure sur une émission de l'Angola de 1994 (6 000 Nkz).

Notes et références

↑ « L'aleurode du cotonnier (Bemisia tabaci) », SRPV Centre (consulté le 21 septembre 2013)
↑ « Nouvel insecticide homologué pour les légumes et les plantes ornementales en serre : le « Distance » », Centre de référence en agriculture et agroalimentaire du Québec (CRAAQ) (consulté le 21 septembre 2013)
↑ ^{a et b} Alain Fraval, « Les aleurodes », Insectes, n^o 155,‎ avril 2009, p. 29
↑ Jacques Barnouin, Ivan Sache et al. (préf. Marion Guillou), Les maladies émergentes : Épidémiologie chez le végétal, l'animal et l'homme, Quæ, coll. « Synthèses », 2010, 444 p. (ISBN 978-2-7592-0510-3, ISSN 1777-4624, lire en ligne), V. Barrière d'espèces et émergences virales, chap. 27 (« L'émergence de maladies virales chez les plantes : des situations variées et des causes multiples »), p. 283-284, accès libre.
↑ Peninna Deberdt et Paula Fernandes - UR Hortsys Cirad, « UTILISATION DES PLANTES DE SERVICES EN CULTURES MARAICHERES - Un exemple d'effet barrière », sur www.supagro.fr (consulté le 16 avril 2017)
↑ (en) « Bemisia tabaci », Delivering Alien Invasive Species Inventories for Europe (consulté le 21 septembre 2013).
↑ (en) Jixing Xia, Zhaojiang Guo, Zezhong Yang, Haolin Han, Shaoli Wang, Haifeng Xu, Xin Yanf, Fengshan Yang, Qingjun Wu, Wen Xie, Xuguo Zhou, Wannes Dermauw, Ted C. Turlings et Youjun Zhang, « Whitefly hijacks a plant detoxification gene that neutralizes plant toxins », Cell,‎ 25 mars 2021 (DOI 10.1016/j.cell.2021.02.014, lire en ligne, consulté le 25 mars 2021).
↑ (en) Heidi Ledford, « First known gene transfer from plant to insect identified », Nature,‎ 25 mars 2021 (lire en ligne, consulté le 25 mars 2021).
↑ (en) Peter M. Collins, Dictionary of carbohydrates, CRC Press, 2005, 1282 p. (ISBN 0-8493-3829-8), p. 538

Voir aussi

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Articles connexes

Miellat
Aleurodes
Aleurode des serres (Trialeurodes vaporariorum)
Liste de ravageurs de plantes cultivées
Liste d'espèces envahissantes classées parmi les plus nuisibles au XXIe siècle

Liens externes

(en) Référence BioLib : Bemisia tabaci (Gennadius, 1889)
(en) Référence Catalogue of Life : Bemisia tabaci (Gennadius, 1889) (consulté le 15 décembre 2020)
(en) Référence Fauna Europaea : Bemisia tabaci (Gennadius, 1889) (consulté le 20 mars 2023)
(en) Référence GISD : espèce Bemisia tabaci (consulté le 21 septembre 2013)
(fr + en) Référence ITIS : Bemisia tabaci (Gennadius, 1889) (consulté le 21 septembre 2013)
(en) Référence Animal Diversity Web : Bemisia tabaci (consulté le 21 septembre 2013)
(en) Référence NCBI : Bemisia tabaci (taxons inclus) (consulté le 21 septembre 2013)
(fr) Référence INPN : Bemisia tabaci (Gennadius, 1889) (TAXREF)
(fr) Aleurode du tabac - INRAE

[1] « L'aleurode du cotonnier (Bemisia tabaci) », SRPV Centre (consulté le 21 septembre 2013)

[2] « Nouvel insecticide homologué pour les légumes et les plantes ornementales en serre : le « Distance » », Centre de référence en agriculture et agroalimentaire du Québec (CRAAQ) (consulté le 21 septembre 2013)

[Fraval-3] {a et b} Alain Fraval, « Les aleurodes », Insectes, n^o 155,‎ avril 2009, p. 29

[quae-4] Jacques Barnouin, Ivan Sache et al. (préf. Marion Guillou), Les maladies émergentes : Épidémiologie chez le végétal, l'animal et l'homme, Quæ, coll. « Synthèses », 2010, 444 p. (ISBN 978-2-7592-0510-3, ISSN 1777-4624, lire en ligne), V. Barrière d'espèces et émergences virales, chap. 27 (« L'émergence de maladies virales chez les plantes : des situations variées et des causes multiples »), p. 283-284, accès libre.

[5] Peninna Deberdt et Paula Fernandes - UR Hortsys Cirad, « UTILISATION DES PLANTES DE SERVICES EN CULTURES MARAICHERES - Un exemple d'effet barrière », sur www.supagro.fr (consulté le 16 avril 2017)

[6] (en) « Bemisia tabaci », Delivering Alien Invasive Species Inventories for Europe (consulté le 21 septembre 2013).

[7] (en) Jixing Xia, Zhaojiang Guo, Zezhong Yang, Haolin Han, Shaoli Wang, Haifeng Xu, Xin Yanf, Fengshan Yang, Qingjun Wu, Wen Xie, Xuguo Zhou, Wannes Dermauw, Ted C. Turlings et Youjun Zhang, « Whitefly hijacks a plant detoxification gene that neutralizes plant toxins », Cell,‎ 25 mars 2021 (DOI 10.1016/j.cell.2021.02.014, lire en ligne, consulté le 25 mars 2021).

[8] (en) Heidi Ledford, « First known gene transfer from plant to insect identified », Nature,‎ 25 mars 2021 (lire en ligne, consulté le 25 mars 2021).

[DoC-2005-538-9] (en) Peter M. Collins, Dictionary of carbohydrates, CRC Press, 2005, 1282 p. (ISBN 0-8493-3829-8), p. 538

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